Popis vyšetření: IMUNOGLOBULIN A (IgA)

Zařezeno v kategoriích:

Synonyma:

imuglobulin alfa, imunoglobulin IgA

IgA, IGA

Preanalytická fáze:

Stanovení se provádí v obvykle v séru, nebo plazmě (antikoagulant EDTA, heparinát lithný), případně v likvoru (nejvíce IgG). Vzorky moče je nutné před elektroforézou nebo imunoelektroforézou 20 – 50-krát zahustit. Vzorky lze zamrazit pokud je to nevyhnutné pouze jednou. Maximální čas od získání do zpracování vzorku je 1 den při doporučené teplotě 4°C.
Stabilita: 18 – 26 °C 1 den, 2 – 8 °C 7 dní, -20° C 3 měsíce.
Stanovení ruší lipémie, bilirubinémie a hemolýza.

Poznámky k analytické metodě:

Z imunochemických metod se nejvíce používá E.P. nebo kinetická nefelometrie, resp. turbidimetrie (radiální imunodifuze a elektroimunodifuze je již zastaralá). Imunofluorimetrie je příliš citlivá.

Nefelometrie je běžně používaná, rychlá a přesná metoda, kdy se detekuje rozptýlené světlo na precipitátu imunoglobuliny a odpovídající protilátky. Novější E.P. metody mají původní inkubaci (15 – 60 min) zkrácenou na přibližně 5 min. Mezidenní reprodukovatelnost pro IgA je 5,7 %. Detekční limit je 17 mg/l.

Turbidimetrie sleduje nárůst absorbance při vzniku precipitátu na běžném analyzátoru. Ke změně absorbance je třeba větší množství precipitátu, takže metoda je asi o řád méně citlivá proti nefelometrii. Vedle E.P. lze použít dvoubodový kinetický postup, např. s měřením v 10. a 225. s při 350 nm. Reprodukovatelnost CV v sérii 1,9 – 2,0 %, celková 2,0 – 2,4 %.

ELISA je také použitelná pro stanovení IgA.

Imunofluorimetrie je o něco méně přesná než nefelometrie. V kompetitivní reakci soutěží imunoglobulin vázaný na pevné fázi s imunoglobulinem ze vzorku o protilátku značenou fluoresceinizothiokyanátem (FITC). Po separaci je výsledná fluorescence (excitace 475 nm, emise 540 nm) nepřímo úměrná stanovanému imunoglobulinu.

Elektroforéza je pouze screeningová metoda pro detekci monoklonálních imunoglobulinů.
Laurelova raketková elektroimunodifuze je imunoprecipitace v agarózovém gelu obsahujícím protilátku. Výška píku při elektroforéze odpovídá množství imunoglobulinu. Není běžně komerčně dostupná.
Kapilární elektroforéza se může použít k separaci imunokomplexu a volných reaktantů, přičemž protilátka je značena fluoresceinem. K detekci se využívá fluorescence vyvolané laserem. Mez detekce je 0,1 mg/l IgA.

Precipitace imunoglobulinů, které jsou špatně rozpustné v roztocích některých solí a separace s následnou kvantifikací biuretovým činidlem je historická a nespecifická metoda. Podobně je tomu v případě precipitace
s koloidním zlatem.

Podle College of American Pathologists (2002) je potřebné dosáhnout pro imunoglobuliny G, A, M preciznost
3 až 7 % na horní hranici normálních hodnot. Přesnost má být na úrovni ± 3 SD.
Intraindividuální variabilita u zdravých dobrovolníků dosahuje během 3 – 5 měsíců 4 – 6 %. Z toho vyplývá, že analytická preciznost odvozená z biologické variability by měla být pro IgA 2,7 % a celková chyba 14 %.

Imunoglobulin A je obsažen v referenčním materiálu CRM 470, kde se uvádí nejistota stanovení 2,04 %.

Tolerační rozmezí EKK je 24 %.

Významné interference:

Výsledky stanovení IgA snižují: depersolon, etanol, fenytoin, kouření, opakované zamrazení, penicilamin, plasmaferéza, revmatoidní artritída, těhotenství, toluen, aj.
Výsledky stanovení IgA zvyšují: interleukin-5, glomerulonefritída, podvýživa, poloha vstoje, porod, výfukové plyny, aj.